除嗜堿性粒細胞外，多形核白細胞(PMN)的漂浮密度比單核細胞大得多，大于1.085 g/ml。不幸的是，紅細胞的漂浮密度往往為1.09 - 1.11 g/ml，這使得使用類似于單核細胞的密度屏障從全血中分離更加困難。為了克服這些困難，已經(jīng)開發(fā)了許多程序。

多晶型制劑的高滲透壓銩導致紅細胞失水和收縮，從而增加其有效浮力密度。這使得葡聚糖聚集的紅細胞通過致密介質(zhì)快速沉淀。

因為隨著細胞進一步沉淀到介質(zhì)中，介質(zhì)和紅細胞之間的滲透梯度下降(即紅細胞的失水在多晶型物的頂部最大并且隨著它們進一步沉淀而逐漸減少)，在密度屏障內(nèi)形成泛影葡胺的梯度。PMNs在該密度梯度內(nèi)形成條帶，而單核細胞留在樣品/培養(yǎng)基界面。

使用特定的LAL試驗檢查每批多晶型制劑的內(nèi)毒素水平。我們的目標是生產(chǎn)內(nèi)毒素水平低于或等于0.13 IU/ml的批次。

該方法僅對未稀釋的全血有效，對富含白細胞的部分無效。溫度對于獲得最佳結(jié)果非常重要，因為溫度的變化會影響多晶型物的密度和粘度解決方案。血樣和培養(yǎng)基的溫度應保持在18-22攝氏度之間。

多晶型制備物頂部和底部條帶的分析銩可以通過Coulter STKR細胞分析儀進行分離。分析儀將樣品中的細胞數(shù)量(縱坐標)確定為細胞體積(橫坐標)的函數(shù)。相對細胞數(shù)是特定體積的細胞數(shù)，表示為每個樣品中總細胞數(shù)的一部分。

多形制劑頂部的細胞帶僅包含外周血單核細胞(PBMCs)。細胞帶本身可分為淋巴細胞(上層，1)和單核細胞(下層，2)。所有PMN都在底部單元帶中，被多晶型制備溶液包圍。紅細胞對PMN帶的污染占細胞總數(shù)的2-6 %